A melhor fase para observação dos cromossomos é na metáfase mitótica, pois encontram-se em máxima condensação e duplicado. Um cromossomo típico é constituído por: 📍 uma constrição primária , denominada centrômero, que divide o cromossomo formando dois braços (braço maior e braço menor). Nela se localiza o cinetócoro. 📍 duas estruturas denominadas cromátides ; 📍 uma constrição secundária ; 📍 uma porção terminal denominada satélite ; e 📍 telômeros , estruturas que protegem os terminais dos cromossomos. Estas estruturas foram apresentadas no esquema do vídeo abaixo. Simplificadamente, pode-se desenhar um cromossomo por meio de: -.- uma linha e um ponto (centrômero) separando os dois braços para representar um cromossomo não duplicado. =.= duas linhas e um ponto para representar um cromossomo duplicado. Sugestões de material didático para aprofundar no assunto: https://youtu.be/AlvE2kHffX8?t=21 (Bibliografia básica para Genética).

Nas células que se encontram em interfase, ou seja, no período entre as fases das divisões celulares, não se observam por meio da microscopia de luz os cromossomos individualizados. O que se percebe no núcleo é apenas o conjunto dos cromossomos que formam uma massa de filamentos finos denominada cromatina . A composição química da cromatina é constituída por DNA (ácido desoxirribonucléico) e proteínas, principalmente histonas. No vídeo abaixo foi citada a analogia entre o barbante e a compactação da cromatina que resulta no cromossomo metafásico . A melhor fase para observação dos cromossomos é na metáfase mitótica , pois encontram-se na máxima condensação e duplicado. Este é um momento adequado para se fazer, por exemplo: - a contagem de cromossomos; - identificação de espécies e do sexo; - verificação de alterações estruturais e numérica dos cromossomos, com implicações na medicina, filogenia, e em outras áreas.

How many individuals...? How many loci...? Alguns estudos que discutem sobre o tamanho amostral em estudos de diversidade genética e temas correlatos. CAVERS, Stephen et al. Optimal sampling strategy for estimation of spatial genetic structure in tree populations. Heredity , v. 95, n. 4, p. 281-289, 2005. https://doi.org/10.1038/sj.hdy.6800709 HALE, Marie L.; BURG, Theresa M.; STEEVES, Tammy E. Sampling for microsatellite-based population genetic studies: 25 to 30 individuals per population is enough to accurately estimate allele frequencies. PloS one , v. 7, n. 9, p. e45170, 2012. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0045170 HOBAN, Sean; STRAND, Allan. Ex situ seed collections will benefit from considering spatial sampling design and species’ reproductive biology. Biological Conservation , v. 187, p. 182-191, 2015. https://doi.org/10.1016/j.biocon.2015.04.023 KALINOWSKI, S. T. Do polymorphic loci require large sample sizes to estimate genetic distances?. Heredity , v. 94, n. 1, p. 33-36, 2005. https://doi.org/10.1038/sj.hdy.6800548 LANDGUTH, Erin L. et al. Effects of sample size, number of markers, and allelic richness on the detection of spatial genetic pattern. Molecular ecology resources , v. 12, n. 2, p. 276-284, 2012. https://doi.org/10.1111/j.1755-0998.2011.03077.x NAZARENO, Alison G. et al. Minimum sample sizes for population genomics: an empirical study from an Amazonian plant species. Molecular Ecology Resources , v. 17, n. 6, p. 1136-1147, 2017. https://doi.org/10.1111/1755-0998.12654 STRUEBIG, Matthew J.; LE COMBER, Steven C.; ROSSITER, Stephen J. Overcoming the issue of small sample sizes in fragmentation genetics. Molecular Ecology , v. 21, n. 12, p. 2850-2851, 2012. https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.2012.05610.x